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賽默飛QuantStudio 5實時熒光定量PCR儀的正確操作使用方法指南。它將分為實驗準備、上機操作、運行監控和后續處理幾個部分,并包含重要的注意事項。
一、賽默飛QuantStudio5實時熒光定量PCR重要部分:實驗準備
1、儀器準備:
(1)開啟電腦和QuantStudio 5儀器電源,等待系統啟動完成。
(2)打開 QuantStudio Design and Analysis 軟件。
(3)檢查儀器狀態,確保無錯誤報警。
2、實驗設計:
在軟件中或紙上規劃好實驗布局,包括:
(1)實驗類型: 標準曲線定量、相對定量(ΔΔCt)、基因分型等。
(2)樣品位置: 明確標準品、待測樣品、陰性對照(NTC)、陽性對照(PC)在板子上的位置。
(3)探針/染料設置: 確定每個孔使用的熒光染料通道(如FAM, VIC, ROX參比染料等)。
3、反應體系配制(在試劑準備區進行):
(1)根據試劑盒說明書或優化后的方案,計算并配制主混合液。
(2)通常包括:SYBR Green qPCR預混液(或TaqMan探針預混液)、正反向引物、探針(如果使用)、無酶水。
(3)將主混合液分裝到PCR板或八連管中。
注意: 整個過程在冰上操作,避免酶失活。
二、賽默飛QuantStudio5實時熒光定量PCR第二部分:上機運行
1、放置樣品板:
(1)打開QuantStudio 5的樣品槽門。
(2)注意板子方向: 將板子帶有A1角標(左上角)的一側對準樣品槽的對應角落,平穩放入。
(3)輕輕關上樣品槽門。
2、創建并設置新實驗:
(1)在軟件主界面點擊 "New" 或 "創建新實驗"。
(2)選擇實驗類型: 如 Quantitation (定量) -> Standard Curve (標準曲線) 或 Quantitation - Comparative Ct (ΔΔCt)。
(3)選擇板子類型: 如96-well, 0.1 mL。
3、設置實驗參數:
(1)指定樣品: 在軟件界面的虛擬板圖上,用鼠標選擇孔位,然后右鍵或從側邊欄設置其類型(Unknown, Standard, NTC等)和樣品名稱。
(2)指定探針/染料: 為每個孔分配檢測通道。例如,在 Detector 或 Assay 欄選擇或創建對應的染料(如FAM-SYBR)。
(3)設置參比染料: 通常選擇ROX作為參比染料,用于校正孔間差異。
4、編輯反應程序:
點擊 Protocol 選項卡,輸入以下典型的qPCR三步法程序:
(1)階段1:UNG酶消化(可選,防污染)
50°C,2分鐘
(2)階段2:熱啟動/預變性
95°C,2-10分鐘(根據預混液說明書)
(3)階段3:PCR循環(40-45個循環)
變性: 95°C,15秒
退火/延伸: 60°C,1分鐘 (在此步驟采集熒光信號)
(4)對于SYBR Green法,通常在退火/延伸結束時采集信號;對于TaqMan探針法,確保設置正確。
5、啟動運行:
(1)檢查所有參數設置無誤后,點擊 "Start Run"。
(2)軟件會提示你輸入實驗名稱、保存路徑等信息。
(3)確認后,儀器將開始運行。你可以聽到風扇啟動和溫控模塊開始工作的聲音。
三、第三部分:運行監控與數據分析
1、實時監控:
(1)在運行過程中,軟件會實時顯示擴增曲線、熒光信號圖等。
(2)檢查陰性對照(NTC)是否有擴增,陽性對照和標準品曲線是否正常。
2、運行結束:
(1)程序運行完畢后,儀器會發出提示音。
(2)軟件會自動保存數據。
3、數據分析:
(1)在Analysis界面,軟件會根據你選擇的實驗類型自動計算Ct值。
(2)對于標準曲線: 檢查標準曲線的斜率和R2值(理想斜率:-3.3, R2 > 0.99)。
(3)對于熔解曲線(SYBR Green): 檢查產物特異性,單一峰表明擴增特異。
(4)設置基線(Baseline)和閾值(Threshold),確保它們設置在擴增曲線的指數增長期。
(5)導出數據結果進行進一步分析。
四、第四部分:運行后處理
1、取出樣品板:
(1)待儀器溫度降至安全范圍后(通常為4°C或室溫),打開樣品槽門,取出樣品板。
(2)注意: 板子和樣品可能含有擴增產物,是潛在的污染源。請按照生物危害廢棄物處理規定進行處理。
2、關機:
(1)通常情況下,儀器無需關閉電源,保持待機狀態即可。如果長期不用,可關閉儀器和電腦電源。
(2)填寫儀器使用記錄。
五、常見問題排查
1、信號弱或無信號: 檢查試劑是否失效、探針/引物設計是否合理、模板濃度是否過低、程序設置是否正確(特別是信號采集步驟)。
2、擴增曲線異常: 檢查是否存在抑制劑、模板降解或加樣錯誤。
3、NTC出現擴增: 表明存在污染,需檢查試劑、水、耗材或操作環境。
4、ROX信號報警: 檢查是否在實驗中設置了ROX參比染料,但使用的預混液不含ROX,或反之。